Hasil Pencarian  ::  Simpan CSV :: Kembali

Abstrak :
Hidrokarbon merupakan susunan senyawa utama pembentuk bahan bakar minyak di kehidupan kita sehari-hari. Produksi hidrokarbon secara konvensional menimbulkan isu lingkungan dan persaingan kebutuhan energi untuk sektor lainnya, seperti industri pangan, pertanian, perindustrian, dan lain-lain. Maka dari itu, sumber energi alternatif mikroalga sebagai bioenergi generasi ke-tiga marak dikembangkan contohnya Chlorella variabilis untuk pengembangan Fatty Acid Phototdecarboxylase (CvFAP). CvFAP ini akan mengkatalisasi proses dekarboksilasi dan mensintesis hidrokarbon dengan kondisi proses yang lebih efektif dan ramah lingkungan. Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis pengaruh variasi parameter proses yang terbagi menjadi tiga tahapan yaitu kultur mikrolaga dalam photobioreactor bubble (laju volumetrik gas, yield CO2, dan jenis sparger), purifikasi protein Chlorella variabilis dengan ion-exchange chromatography (porositas bed, porositas adsorben, dan kecepatan interstitial), dan sintesis hidrokarbon berbasis asam palmitat dalam fixed-bed reactor (konsentrasi substrat, kecepatan superfisial, temperatur, panjang reaktor, diameter reaktor, dan diameter partikel bed) untuk mendapatkan parameter optimum. Dengan melakukan simulasi model diferensial dan penetapan kondisi optimum terhadap ketiga tahapan tersebut, didapati parameter optimum seperti peningkatan konsentrasi 767,97% dari konsentrasi awal mikroalga hasil kultivasi, sebanyak 99,75% terpurifikasi dari crude protein, dan 38,80% konversi dengan selektivitas produk pentadekana 76,79% dan heksadekana 23,21% dari total produk hasil konversi ......Hydrocarbons are the main compounds forming fuel oil in our daily lives. Conventional hydrocarbon production raises environmental issues and competition for energy needs for other sectors, such as the food industry, agriculture, industry, and others. Therefore, alternative energy sources of microalgae as third-generation bioenergy are being developed, for example, Chlorella variabilis for the development of Fatty Acid Phototecarboxylase (CvFAP). CvFAP will catalyze the decarboxylation process and synthesize hydrocarbons with more effective and environmentally friendly process conditions. This study aims to analyze the effect of variations in process parameters which are divided into three stages, which are microalgae culture in the photobioreactor bubble (gas volumetric rate, CO2 yield, and type of sparger), purification of Chlorella variabilis protein by ion-exchange chromatography (bed porosity, adsorbent porosity, and interstitial velocity), and synthesis of hydrocarbons based on palmitic acid in the fixed-bed reactor (substrate concentration, superficial velocity, temperature, reactor length, reactor diameter, and particle bed diameter) to obtain the optimum parameters. By simulating the differential model and determining the optimum conditions for the three stages, optimum parameters were found such as an increase in the concentration of 767.97% from the initial concentration of cultivated microalgae, as much as 99.75% purified from crude protein and 38.80% conversion with product selectivity. pentadecane 76.79% and hexadecane 23.21% of the total converted product

Abstrak :
ABSTRAK
Salah satu permasalahan yang dihadapi oleh pengobatan regeneratif menggunakan sel punca adalah metode verifikasi sifat pluripotensi terhadap sel punca yang telah diperoleh. Verifikasi sifat pluripotensi dilakukan dengan menggunakan antibodi untuk mengenali protein marka sel punca yang dihasilkan oleh sel tersebut. Penelitian ini bertujuan untuk mengekspresikan dan mempurifikasi salah satu protein marka sel punca, yaitu SOX2 sehingga dapat digunakan untuk memproduksi antibodi yang dapat digunakan untuk proses verifikasi tersebut. Ekspresi protein SOX2 dilakukan pada sistem ekspresi Escherichia coli BL21 codon plus dengan menggunakan plasmid rekombinan pQE-80L Sox2, kemudian protein SOX2 diverifikasi secara kualitatif dengan menggunakan SDS-PAGE dan Western blot. Hasil menunjukkan bahwa SOX2 telah berhasil diekspresikan pada sistem ekspresi yang digunakan, namun kodon gen sintetik Sox2 yang belum teroptimasi untuk beradaptasi pada sistem ekspresi menyebabkan jumlah protein yang dihasilkan sedikit. Purifikasi SOX2 juga telah berhasil dilakukan dengan menggunakan sistem purifikasi Ni-NTA dalam keadaan terdenaturasi.

---

ABSTRACT
One of the problems faced by the use of stem cells in regenerative medicine is to find a proper method for verifying the pluripotency of a stem cell obtained. Verification of the cell pluripotency can be accomplished by using an antibody to identify the stem cell protein marker produced by the cell. The purpose of this research is to express and purify one of the stem cell marker protein, SOX2, in order to produce the antibody that can be used in the verification process. SOX2 protein expression was acomplished by using Escherichia coli BL21 codon plus expression system as host with pQE 80L Sox2 recombinant plasmid. The protein SOX2 obtained then was qualitatively verified by using SDS PAGE and Western blotting. Result showed that SOX2 has been successfully expressed by the expression system used. However, the unoptimized codon of the synthetic Sox2 gene causing the codon unable to adapt properly to the expression system, therefore may affect the translation process and lower the protein yield. Purification of SOX2 protein was also has been successfully conducted by using Ni NTA purification system in denatured protein condition.